Syto-histologinen hybridikontrolli : immunohistokemian kontrolli sytologisen näytemateriaalin kontrollointiin

Abstract

Patologian laboratoriossa käsitellään sytologisia ja histologisia näytteitä, joista sytologiset näytteet fiksoidaan 50% etanolilla, ja histologiset näytteet 10% formaliinilla. Molempia näytemateriaaleja värjätään immunohistokemiallisilla värjäyksillä tautidiagnostiikassa, mutta kontrollimateriaalina käytetään vain formaliinifiksoitua materiaalia. Opinnäytetyössä vertailtiin formaliini- ja etanolifiksoitujen näytteiden värjäysten laatua, ja sytologisen näytemateriaalin värjäysten laadun parantamiseksi kehitettiin multiblokista leikattava hybridikontrolli, joka sisältää sekä formaliini- että etanolifiksoitua kudosta. Tutkimuksen tarkoituksena oli selvittää, miten etanolifiksaatio vaikuttaa immunohistokemiallisten värjäysten laatuun, ja voisiko hybridikontrolli toimia luotettavampana kontrollimateriaalina kuin pelkkää formaliinifksoitua kudosta sisältävä kontrolli. Tavoitteena oli kehittää sytologisten näytteiden immunohistokemiallisten värjäysten laatua.

Tutkimuksessa vertailtiin 16 immunohistokemiallisen värjäyksen laatua histologisen ja sytologisen näytemateriaalin välillä. Värjäystulokset pisteytettiin vertailun helpottamiseksi. Etanolifiksaation todettiin heikentävän laatua osassa värjäyksistä. Kaikissa värjäyksissä huomattavia eroja ei havaittu. Immunohistokemiallisia värjäyksiä voidaan siis tehdä myös etanolifiksoiduille näytteille. Formaliinifiksoidun kontrollin käyttäminen etanolifiksoidun näytteen kanssa voi kuitenkin aiheuttaa virheitä tulkinnassa. Syto-histologinen hybridikontrolli sisältää formaliini fiksoidun materiaalin, josta voidaan varmistaa värjäyksen onnistuminen sekä etanolifiksoidun materiaalin, jonka avulla voidaan arvioida värjäyksen soveltuvuutta sytologiselle näytteelle.

Cytological and histological samples are processed in the pathology laboratory, of which cytological samples are fixed with 50% ethanol, and histological samples with 10% formalin. Both sample materials are stained with immunohistochemical stains in disease diagnostics, but only formalin-fixed material is used as control material. In the thesis, the quality of staining of formalin- and ethanol-fixed samples was compared, and to improve the quality of staining of cytological sample material, a hybrid control containing both formalin and ethanol-fixed tissue cut from a multiblock was developed. The purpose of the study was to find out how ethanol fixation affects the quality of immunohistochemical stainings, and whether the hybrid control could serve as a more reliable control material than a control containing only formalin-fixed tissue. The goal was to improve the quality of immunohistochemical staining of cytological samples.

The study compared the quality of 16 immunohistochemical stainings between histological and cytological sample material. The staining results were scored to facilitate comparison. Ethanol fixation was found to reduce the quality of some of the stains. No significant differences were observed in all stainings. Immunohistochemical staining can therefore also be done on ethanol-fixed samples. However, using a formalin-fixed control with an ethanol-fixed sample can cause errors in interpretation. The cyto-histological hybrid control contains formalin-fixed material, which can be used to ensure the success of the staining, and ethanol-fixed material, which can be used to evaluate the suitability of the staining for cytological samples.