Elektronisten ja mekaanisten pipettien vertailu 2D- ja 3D-soluviljelyssä
Tenetz, Emma (2024)
Tenetz, Emma
2024
All rights reserved. This publication is copyrighted. You may download, display and print it for Your own personal use. Commercial use is prohibited.
Julkaisun pysyvä osoite on
https://urn.fi/URN:NBN:fi:amk-202401181532
https://urn.fi/URN:NBN:fi:amk-202401181532
Tiivistelmä
Tämä opinnäytetyö tehtiin kansainväliselle laboratoriovälineitä valmistavalle Sartoriukselle. Työn tavoitteena oli vertailla elektronisia ja mekaanisia pipettejä 2D- ja 3D-soluviljelyssä ja selvittää, millä saadaan parhaimmat tulokset. Vertailtavat pipetit olivat eritilavuuksisia 8-kanavaisia Tacta®- ja Picus®-pipettejä, ja käytettävät pipetointitekniikat olivat käänteinen tekniikka sekä Picus-pipetin moniannostelutoiminto. 2D-soluviljelyssä vertailtiin solujen istuttamista litteäpohjaisille kuoppalevyille. 3D-soluviljelyssä vertailun kohteena oli sferoidien istuttaminen U-pohjaisille kuoppalevyille, kasvatusliuoksen vaihto sferoideille sekä sferoidien hajottaminen.
Parhaat tulokset 2D-viljelmien ja sferoidien istuttamisessa sekä sferoidien kasvatusliuoksen vaihdossa, saatiin elektronisella 8-kanavaisella Picus 120 -pipetillä käänteisesti pipetoiden. Sferoidien hajottamisessa parhaat tulokset taas saatiin suspensoimalla sferoideja nopeasti mekaanisella 8-kanavaisella Tacta 300 -pipetillä.
Soluviljelytestien lisäksi tehtiin pipetointitestejä, joissa vertailtiin eri soluviljelyssä käytettyjen nesteiden pipetoimista, ja tutkittiin Tacta-pipettien kalibroinnin säätöä. Testattavat nesteet olivat glyseroli (75 %), Tween® 20 (10 %) ja DMEM + FBS (10 %). Testien tavoitteena oli selvittää, paranisivatko tulokset pipettien kalibroinnin säädöllä. Nesteille yritettiin löytää myös parhaat pipetointitekniikat. Testeissä käytettiin yksikanavaisia Tacta 1000- ja Tacta 200 -pipettejä.
Glyserolin (75 %) pipetointi onnistui parhaiten käänteisesti pipetoimalla, ilman pipetin säätämistä, mutta Tween 20 (10 %) ja DMEM + FBS (10 %) antoivat suuret systemaattiset virheet, joita voitaisiin parantaa säätämällä pipettiä. Pipetointitestejä pitäisi kuitenkin jatkaa, sillä testit eivät olleet tarpeeksi laajat, että niitä voitaisiin yleistää muihin tilanteisiin.
Parhaat tulokset 2D-viljelmien ja sferoidien istuttamisessa sekä sferoidien kasvatusliuoksen vaihdossa, saatiin elektronisella 8-kanavaisella Picus 120 -pipetillä käänteisesti pipetoiden. Sferoidien hajottamisessa parhaat tulokset taas saatiin suspensoimalla sferoideja nopeasti mekaanisella 8-kanavaisella Tacta 300 -pipetillä.
Soluviljelytestien lisäksi tehtiin pipetointitestejä, joissa vertailtiin eri soluviljelyssä käytettyjen nesteiden pipetoimista, ja tutkittiin Tacta-pipettien kalibroinnin säätöä. Testattavat nesteet olivat glyseroli (75 %), Tween® 20 (10 %) ja DMEM + FBS (10 %). Testien tavoitteena oli selvittää, paranisivatko tulokset pipettien kalibroinnin säädöllä. Nesteille yritettiin löytää myös parhaat pipetointitekniikat. Testeissä käytettiin yksikanavaisia Tacta 1000- ja Tacta 200 -pipettejä.
Glyserolin (75 %) pipetointi onnistui parhaiten käänteisesti pipetoimalla, ilman pipetin säätämistä, mutta Tween 20 (10 %) ja DMEM + FBS (10 %) antoivat suuret systemaattiset virheet, joita voitaisiin parantaa säätämällä pipettiä. Pipetointitestejä pitäisi kuitenkin jatkaa, sillä testit eivät olleet tarpeeksi laajat, että niitä voitaisiin yleistää muihin tilanteisiin.